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轻松七步掌控免疫荧光

2021-04-06 12:54:12

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——日读一帖,解螺旋大V团队伴你科研路


作者:中子

解螺旋出品,转载需经授权 


 免疫荧光技术(Immunofluorescence technique )又称荧光抗体技术,它是标记免疫技术中发展最早的,在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术,对抗原进行细胞定性和定位分析。Coons等于1941年首次采用荧光素进行标记而获得成功。自此该技术在科研领域发光发热啦!


  免疫荧光主要有如图两种检测方法:



  

  新手在开始免疫荧光实验的时候,经常被例如细胞铺板密度、细胞固定以及如何确保抗体特异性等问题困扰,以下是中子几年实验下来的一些小小建议,希望可以帮助小伙伴们获得更好的实验结果:


1、 对于细胞爬片的免疫荧光选择合适的细胞种板密度


  细胞数过多时,生长过密,细胞结构不清,易导致染色背景深,细胞数过少时,会使贴壁贴壁不佳,状态不好,一般以六孔板为例,(1-5)×100000比较适宜。


2、细胞更好地固定


  为达到最佳检测效果,细胞需要经过固定和通透,此步骤很重要,现在固定液选择比较多,有4%多聚甲醛、甲醇、乙醇、丙酮以及丙酮和甲醇混合液(1:1),但效果最好的应用最多的还是推荐4%多聚甲醛。


3、优化封闭液


  为防止内源性非特异性蛋白抗原的结合,需要在一抗孵育前先用血清(与二抗来源一致 如 一抗为兔抗,二抗为山羊抗兔,那么封闭液就用山羊血清)封闭,减弱背景着色。


  血清封闭的时间是可以调整的,一般为30min。


4、抗体的特异性,设立对照组


  这个关系到结果的准确性,一定要选择特异性强的抗体,这样可以避免高背景和不理想的蛋白定位,并且选择合适的抗体稀释比例,一般1:20-100 之间比较合适,但还是要自行摸索最佳梯度,建立最好的稀释比例,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察噢!加入荧光抗体后一定要记得避光!!!每次试验时 ,建议设置以下三种对照:


① 阳性对照:阳性血清+荧光标记物

② 阴性对照:阴性血清+荧光标记物

③ 荧光标记物对照:PBS+荧光标记物


5、洗涤也要重视


  为了防止一抗、二抗等试剂残留而引起非特异性染色,所以适当地加强清洗(延长时间和增多次数)尤为重要,一般在一抗的清洗是5min*3次;


注意:

(1)单独冲洗,防止交叉反应造成污染。

(2)温柔冲洗,防止切片的脱落;

(3)冲洗的时间要足够,才能彻底洗去结合的物质。

(4)PBS的PH和离子强度的使用和要求,建议PH在7.4-7.6浓度是0.01M。(中性及弱硷性条件(PH7-8)有利于免疫复合物的形成,而酸性条件则有利于分解;低离子强度有利于免疫复合物的形成,而高离子强度则有利于分解)


6、复染和封片是最后收尾工作


  复染的目的是形成细胞轮廓,从而更好地对目标蛋白进行定位(一般常用DAPI复染)。而为了长期保存,我们一般用缓冲甘油等封片,此外还有专门的抗荧光萃灭封片液(如博士德等公司);同时还要注意避免产生气泡。


7、见证“奇迹“的时刻——荧光显微镜下观察实验结果


  荧光染色后一般在1h内完成观察,或于4℃保存4h,一般标本在高压灯下照射超过 3min,就有荧光减弱现象,经荧光染色的标本最好在当天观察,随着时间的延长,荧光强度会逐渐下降。



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