标本采集

一、前    言

为保证临床检验质量，必须对涉及检验的全过程进行全面质量控制和管理。其中，分析前质量控制尤为重要。它是指从医生开具检验申请单开始，将样品运送至实验室的全过程。包括病人的准备、样品的采集和储存、样品的运送和处理等。规范合理地留取和收集样品是获得可靠的检验结果的根本保证，也是临床检验质量管理控制的重要因素。因此，医护和检验人员均应重视检验样品的正确采集和传递。

根据CNAS—CL02:2012《医学实验室——质量和能力的专用要求》，检验科编写了《检验用户手册》（简称用户手册），用以规范临床和检验科样品采集、保存、运输和实验室工作人员的验收，同

时也可作为医护人员对患者的准备、采样及样品运送过程中的培训。

本手册分检验样品采集及送检的基本要求及各类样品采集的方法。内容涉及到检验项目一览、样品的采集及运送要求、危急值项目范围及报告流程、各种检验指南（常用检验项目的参考区间及临床意义）等部分。本手册完成后请医务科、护理部进行审批后下发临床及物业执行并作为实验室认可文件的一部分。

二、检验项目生物学变异

1  生物学变异概述

   人体的化学和物理学性质随环境（如海拔、失重、暴露于光线）、气候（季节）、性别、年龄、生理学（月经、绝经、身高、体重、冲动、姿势等）、生活习惯等的不同而在个体内环境改变，称之为生物学变异（biological variability)。

   生物学变异科分为个体内和个体间变异两类。受试者在不同身体状况下（激动、月经等），其样本检测值围绕一个“临界值（Hemostatic Set Point)”变化，称为个体内变异；而不同受试者间“临界值”的差异称为个体间变异。

2  生物学变异的影响因素

   可引起生物学变异的因素有很多，包括年龄、体位、饮食、失重、噪音、视觉缺失、维生素B6缺乏、冲动、肌肉锻炼、禁食、泌乳、药物等，这些物质或现象的出现会引起人体内环境的改变，特别是血液学和生化物质的增减，而干扰了临床医生对检验结果的判断。

2.1  运动  运动员与不常运动的人群相比，其血清骨骼肌的相关酶活性更高，这可能是源于骨骼肌肉含量的增加和剧烈运动时骨骼肌的挤压引起的。马拉松运动以后，如血钾、钠、钙、碱性磷酸酶、清蛋白、糖、无机磷、尿酸、尿素、胆红素、天冬氨酸氨基转移酶等均升高1倍以上，肌酸磷酸激酶升高4倍以上。

2.2  饮食  饮食习惯及人体对食物的吸收可以非常显著地影响血浆成分的组成。一顿标准餐后，甘油三酯增加50%，天冬氨酸氨基转移酶增加20%，胆红素、无机磷、钙、钠、和胆固醇增加5%左右。其中饮食结构不同对上述指标的影响也是各有不同。高脂肪饮食会使甘油三酯大幅度升高，高蛋白饮食会使氨、尿酸和尿素升高，而素食主义者的低密度值蛋白-胆固醇与极低密度脂蛋白比非素食主义者下降37%和12%。

2.3  性别  性别的差异可表现在多种血液学和生化指标上，因为男性的肌肉组织比例较高，所以其与肌肉组织有关的指标都比女性高。由高至低，男性比女性高的常见指标有：甘油三酯、肌酸磷酸激酶、胆红素，转氨酶、肌酸酐、肌红蛋白、尿酸、尿素、氨、天冬氨酸氨基转移酶、血红蛋白、酸性磷酸酶、红细胞计数、氨基酸、碱性磷酸酶、胆碱酯酶、铁、葡萄糖、低密度脂蛋白-胆固醇、清蛋白、IgG、胆固醇和总蛋白等。有高至低，女性比男性高的常见指标有：高密度脂蛋白-胆固醇、铜和网织红细胞等。

2.4  体位  卧位采血与坐、立位采血结果是有区别，坐、立位与卧位相比，静脉渗透压增加，一部分水从心血管系统转移到间质中去。正常人直立位时血浆总量比卧位减少12%左右，血液中体积>4nm的成分不能通过血管壁转移到间质中去，使其血浆含量升高5%~15%。常见的指标有：血红素、白细胞计数、红细胞计数、血细胞比容、总钙、天冬氨酸氨基转移酶、碱性磷酸酶、甲状腺素、IgG、IgA、清蛋白，总蛋白、载脂蛋白B、胆固醇、低密度脂蛋白、甘油三酯。静脉压的改变又进一步导致血管活性物质的释放，直立位时，醛固酮、肾上腺素、血管紧张素和去甲肾上腺素都有7%~70%不等的升高。

2.5  年龄  年龄是引起生物学变异的另一关键因素，其影响可以用不同的参考范围来区别。健康的生长期儿童的骨骼生长和发育表现为成骨细胞分泌碱性磷酸酶增加，因此，生长期儿童的碱性磷酸酶活性比健康成年人约高3倍。新生儿的红细胞计数高于成年人，出生后大量的RBC被破坏，使血红蛋白水平增加，血红蛋白在网状内皮系统中转变成间接胆红素，由于新生儿肝中缺乏葡萄糖醛酸转移酶，不能将间接胆红素转变成水溶性的结合胆红素，表现为血清中总胆红素和间接胆红素水平增加。年龄可以影响肾功能，表现为肌酐清除率的变化，肌酐清除率每隔10年会渐渐减少。而抗利尿激素的水平随着年龄的增长而升高。不仅如此，甲状腺激素水平同样受到年龄的影响。促甲状腺素水平在老年人群比青年人群高38%；而老年组血清三碘甲腺原氨酸水平比青年组低11%。

2.6  妊娠  妊娠时血容量增加导致血液稀释，使微量元素的测定结果明显降低；在妊娠后期，胎盘产生雌激素和毛绒膜促生长激素，使血清载脂蛋白AⅠ、AⅡ、甘油三酯和总胆固醇（特别是低密度脂蛋白-胆固醇）大大增加。妊娠时胎盘生成热稳定碱性磷酸酶、甲胎蛋白、铜蓝蛋白、急性时相蛋白和凝血因子，使相应的检查结果升高。

2.7  视觉缺失  当人失明后，人体下丘脑-垂体-肾上腺轴的正常刺激的反应减弱，随后垂体和肾上腺功能减退的症状慢慢出现。有些失明的患者体内皮质醇的分泌任然维持着昼夜节律，可也有相当部分失明画着没有了这个节律，而表现混乱。尿液中17-羟皮质类固醇与17-酮皮质类固醇的排泄减少。血清离子浓度的昼夜节律消失，并且随着醛固酮的分泌减少，还会引起血浆中氯化钠水平降低。不仅如此，失明患者还可能伴有轻微的肾功能损害，血清中尿素与肌酐的含量比正常人要高。血清蛋白的水平会有所下降，表现为负氮平衡状态，但血清胆固醇与胆红素水平高于正常人参考值上限。

2.8  其它  除以上几点，还有很多重要的因素可以引起生物学变异，如药物、生活习惯、饥饿、失重、噪音、维生素缺乏等。这些错综复杂的因素可能单独干扰，也可能联合作用，而使得很多血液学和生化指标收到影响。如何掌握检验项目的生物学差异，向临床提供准确有价值的检验结果，是临床检验工作一个严峻的考验。

3  常用检验项目的生物学变异

  引起检验项目生物学变异因素复杂，各种因素引起变异的结果缺乏精确的研究数据。国外许多专家致力于生物学变异的研究，对常用项目累积了一些数据。但远远不能满足临床要求，需要进一步研究，下面介绍部分检验项目的生物学差异。

3.1  丙氨酸氨基转移酶  100kg体重的男性较50kg者约升高85%，20~30岁超负荷的男性约可升高60%，长期剧烈运动的男性约可升高30%。100kg体重的女性较40kg者约升高35%，20~30岁的女性超负荷者约升高10%，部分性别，慢性摄入乙醇者约升高30%，40~60岁年龄组约升高20%，站立位较卧姿高约10%，4~14岁年龄组约降低10%，维生素B6缺乏者约降低40%。

3.2  天门冬氨酸氨基转移酶  氯贝丁酯（安妥明）型低脂蛋白血症约升高20%，慢性饮酒约升高20%，轻度溶血约升高10%，捆缚约升高10%；男性：长期剧烈运动约升高75%，20~30岁组超负荷约升高15%，100kg体重较50kg者约升高10%，40~50岁年龄组约升高10%，50~60岁约升高10%。女性：50~60岁约升高15%，20~30岁超负荷约升高10%。维生素B6缺乏约降低30%，4~14岁年龄组约降低10%，维生素B6缺乏者约降低30%。

3.3  乳酸脱氢酶  在男性，长期剧烈运动约升高40%，中强度的锻炼约升高15%，口服避孕药约可降低6%。

3.4  肌酸激酶  血清中CK  男性高于女性，1岁以上儿童含量与成年人相同，1个月内的婴儿为正常成年人的2~5倍。肌肉发达者CK活力较高，黑种人的CK在骨骼肌、心肌和脑组织中含量很高。

3.5  碱性磷酸酶  超负荷的女性约升高1%，饭后可升高5%~20%，系小肠ALP同工酶升高所引起的。口服避孕药可降低10%，女性氯贝丁酯型低脂蛋白血症降低10%,男性氯贝丁酯型低脂蛋白血症约降低25%，均系影响肝ALP同工酶活力而致总ALP活力降低的。

3.6  L-γ-谷氨酰转肽酶  20~30岁超负荷的男性升高约58%，慢性酒精中毒升高20%~40%，40~90kg的女性约升高42%。4~10岁的儿童约降低10%。

3.7  胆碱酯酶  饮酒约升高20%，工期负重约升高18%，100kg体重较50kg者约升高18%，剧烈运动可致升高。女性口服避孕药约降低10%，青春期可降低14%，25~40岁约降低20%，妊娠降低25%~30%；不分性别的遗传变异，该酶活力明显降低。

3.8  总蛋白  站立较卧躺高约10%，夏季较冬季约升高8%，捆缚约升高5%，适度用力约升高3%，口服避孕药的女性约降低2%。

3.9  白蛋白  持久用力约升高10%，直立较卧姿约升高10%，夏季较冬季约升高4%，中度用力约升高3%，应用止血带取血约升高3%。吸烟可使白蛋白降低3%，慢性摄入乙醇约降低5%，60~80岁老年人约降低8%，服用抗癫痫药物约降低8%，4d~100d的婴儿可降低20%，妊娠可降低25%。

3.10 总胆红素  紫外线、太阳光、白炽灯照射过的标本，其结果将显著降低。

3.11  尿素  大量白蛋白饮食升高30%，50~60岁的女性约升高3%，而男性约升高15%，农民较自由职业者约升高10%，40~50岁的人约升高10%，季节（夏季）变异升高15%。酗酒约降低5%，吸烟约降低10%，3期妊娠约降低10%，4~10岁儿童约降低12%。

3.12  肌酐  大量运动的男性约升高20%，不分性别，季节律变异约升高6%，昼夜率（夜间)约升高5%，55~60岁老人约升高5%。4~10岁儿童约降低30%，妊娠约降低6%，女性比男性的值要低。

3.13  尿酸  瘦肉饮食约升高150%，遗传学上的大洋洲人约升高30%，脑力劳动者比体力劳动者约升高17%，饮酒、富含嘌呤类饮食升高10%~30%；精神紧张约升高5%，超负荷的升高15%，绝经约升高10%；低嘌呤类饮食约降低15%，14~20岁的男性约降低6%，4~14岁的男孩约降低30%，4~20岁的女孩约降低5%，口服避孕药约降低5%，A型血型较AB型血女性约降低12%，妊娠约降低12%。

3.14  黏蛋白  肥胖妇女约升高26%，月经周期开始约升高14%，男性约升高15%，锻炼约升高12%，妊娠降低20%~30%，口服避孕药降低21%~36%。

3.15  铜蓝蛋白  新生儿由于肝脏功能发育不完善，合成铜蓝蛋白的能力有限，处于较低水平，出生后3~6个月可达正常人的浓度；妇女妊娠期由于血清铜增多，血浆铜蓝蛋白明显升高。

3.16  铁蛋白  测定值与年龄性别有关，绝经期妇女和16岁以下儿童较低，男性明显高于女性。

3.17  免疫球蛋白  黑种人升高20%~75%，60~80岁老人升高15%~60%，雨季较旱季约升高20%，锻炼约升高14%，冬季较夏季升高10%~14%，肥胖女性约升高30%，男性升高4%~30%；口服避孕药降低11%~40%，妊娠约降低20%。

3.18  葡萄糖  长期饮酒约升高20%，饭后升高10%~40%，取血前吸烟升高约10%。长期体育锻炼约降低5%，高海拔约降低5%。在女性，饥饿2d约降低18%，妊娠妇女进行性降低12%；在男性，饥饿3d约降低12%，饥饿2d约降低10%。

3.19  甘油三酯  妊娠约升高50%，餐后可升高20%~100%，平均升高50%，口服避孕药约升高40%，富含饱和脂肪酸的饮食升高35%，50~60岁老人约升高30%，吸烟约升高20%，长期饮酒约升高15%，维生素D约升高10%，超负荷约升高50%。激烈活动可降低15%，新生儿约降低50%。

3.20  总胆固醇  妊娠期的第7~9个月约升高45%，40~50岁的女性约升高10%，绝经期约升高10%，不分性别慢性饮酒约升高10%，富含饱和脂肪酸的饮食约升高6%，长期负重约升高4%，吸烟者约升高4%。B型血的人较A型血的人约降低5%，素食者约降低5%，生理锻炼可降低5%，月经周期的黄体期约降低20%，新生儿约降低50%。

5.20  钾  男性食入水果过多约升高30%，用止血带取血约升高12%，溶血导致升高。中等强度锻炼可降低8%。

3.22  钠  高钠饮食约升高15%，昼夜率变异中约升高3%，最高值在11时，长期低钠饮食约降低5%。

3.23  钙  制动约升高10%，站立比躺下约升高5%，用止血带约升高5%。在女性，口服避孕药约降低4%，妊娠约降低5%，哺乳约降低5%。

3.24  磷  4~10岁男孩约升高30%，男性少量饮酒后取血约升高15%，男性轻度运动后约升高7%，女性绝经后约升高10%。65~80岁男性约降低5%，超载负荷的男性约降低5%，青春期的男性和女性约降低85%，芳香性有机溶剂中毒约降低12%，口服避孕药约降低15%。

3.25  药物对检测结果的影响  药物对检测结果的影响是显著地，其作用机制是复杂的，药物在发挥治疗作用的同时也影响了组织、器官的功能与物质的新陈代谢。另外，药物本身的化学性质干扰了测量方法中化学反应从而导致结果的假性升高或假性降低。

 

三、检验项目的申请及患者准备的要求

1.医生申请及患者准备

由于临床检验样品对结果的影响因素较多，医生在详细了解患者的基本病情后，根据病情需要开具相应的检验申请单，向患者告知检验目的、样品采集时的注意事项及要点和采集时间。

2 患者准备

2.1 血液样品采集前患者的准备：

2.1.1 由医护人员告知患者需要静脉或动脉采血及采血时间。做糖耐量试验时，还需向患者解释该试验可能需要多次采血。

2.1.2 在采血的前一天晚上不应有剧烈的运动，采血当日早晨应避免剧烈运动和劳动，采血前应有10分钟的休息。采血时，患者要保持相对安静和情绪稳定。冬季采血时应要求患者暖和后保持血液循环通畅并休息10分钟后采血，以保证检验结果真确性。

2.1.3 一般采血前24小时要素食。避免食用或少食用高脂类食物及水果，同时停止引用咖啡/咖啡类饮料、浓茶类饮料及酒类。多数试验，尤其是血液学检查，易受饮食成分的影响，因为吸收多的饮食成分不仅可以直接影响测定时的吸光度（如甘油三酯造成的浑浊），而且还可以改变血液成分（如血糖、淀粉酶、碱性磷酸酶活性升高等），影响检测结果。因此，最好是空腹8-14小时采血，尤其是早晨空腹采血，许多正常参考范围是以空腹血液测定值为基础的，急诊及一些特殊要求的实验（如餐后2小时血糖测定）及不受饮食影响的一些检测项目例外，如某些酶类、尿素、肌酐、钙、钠、胆固醇测定等。

 空腹采血主要是防止饮食的影响，但并非空腹时间越长越好，延长空腹时间，病人处于饥饿状态过久，会使血糖、蛋白质降低，胆红素结果异常，血糖可因空腹过长而降低为低血糖；空腹过度反致甘油三酯、甘油、游离脂肪酸增加，故空腹时间不宜过长，8-14小时为宜。

 尿、便检查也需要注意饮食影响，如进食富含葡萄糖的食物，可引起一过性尿糖阳性，进食动物血、肉、内脏及富含铁质的蔬菜时，可引起化学法检测大便隐血的假阳性。

2.1.4 一般采血前要避免吸烟或少吸烟。长期吸烟者血液一氧化碳血红蛋白含量可达8%，而不吸烟者含量在1%以下。此外儿茶酚胺、血清皮质醇亦较不吸烟者含量高；血液方面亦有变化，白细胞数增加，嗜酸性粒细胞减少，中性粒细胞及单核细胞增加，血红蛋白偏高，平均红细胞体积偏高。

2.1.5 饮酒可使血浆乳酸、甘油三酯、尿酸增加。长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高，平均红细胞体积增加，γ-谷氨酰转移酶（GGT）亦较不饮酒的人为高，为此GGT常作为嗜酒者的筛选检查。

2.1.6 某些用药患者根据具体情况，尽量避免药物干扰。一般要求病人停用药物2天后采血。放化疗患者要求在放化疗前采集样品，以保证结果的准确性。

2.1.7 体位影响血液循环，由于血浆和组织间液因体位不同而平衡改变，尤其细胞成分和大分子物质的改变较为明显。例如由卧位改为站位，血浆白蛋白浓度增大，总蛋白、酶、钙、胆红素、胆固醇及甘油三酯等亦因站位而浓度增加；血红蛋白，血细胞比容、红细胞计数亦于站位时增加。为减少这种影响，采血病人的体位应相对固定，门诊一般采用坐位采血，采血前应让病人有10分钟的时间稳定自己的体位；住院病人可选取卧位采血，对某些医嘱要求卧位采血的项目谨遵遗嘱执行。

2.1.8 采血前应向患者做适当的解释，以消除患者的疑惑及恐慌。

2.1.9 糖耐量试验：WHO标准化的OGTT是：试验前数日，患者可正常饮食（如果患者食量少，试验前2天每天要进食糖水化合物250-300g），停用胰岛素和肾上腺皮质素等药物；试验前3天，受试者每日食物中糖含量应不低于150g，且维持正常运动。影响试验的药物需在3天前停用，受试前应空腹8-14小时，次晨空腹采血。坐位采血后根据医生要求5分钟内饮入250ml含75g无水葡萄糖的糖水。服糖后，于30分钟、1小时、2小时、3小时各采血一次，前后共五次。整个试验过程中不可吸烟、喝咖啡、喝茶或水及进食。

2.1.10 血脂、血流变检测：血脂、血流变分析采血前3天禁止食用高脂肪食物，应在禁食12小时候采血检测，采血前不要过量饮水。因血脂、血流变检测易受饮食情况和年龄、性别等多种因素的影响，患者最好于采血前3周不要改变饮食习惯，采集样品前4周，体重应处于稳定状态。并于前3天至采血前禁饮咖啡或酒。近期应无急性疾病、损伤或外科手术史。患者若服用降血脂类药，需在检查前24小时内停止服用，以保证结果的准确性。

2.2 尿液样品收集前患者的准备：

2.2.1 男性病人的准备：

1）采尿前病人应先洗手；

2）指导未行包皮切除的患者应推上包皮露出尿道口；

3）用消毒清洁的小布巾或类似物清洁头，从尿道口开始向上清洁；

4）病人开始排尿时将前段尿排入便盆或厕所，收集中断尿到清洁干燥的容器中，多余的尿排入尿盆或厕所；

5）如病人不能执行所推荐的方法，需要提供帮助时，应戴手套。

2.2.2 女性病人的准备；

1）采尿前病人应先洗手；

2）病人蹲于便盆或马桶之上；

3）用消毒小布巾或清水清洁尿道口和周围处；

4）病人开始排尿时将前段尿排入便盆或厕所，收集中段尿到清洁干燥的容器中，多余的尿排入便盆或厕所；

5）如病人不能执行所推荐方法，需要提供帮助时，应戴手套。

2.3 导尿病人：导尿样品是通过尿道将导管插入膀胱后收集的样品。从导出的尿中选择一部分做尿样品。其过程由医护人员按有关导尿的操作规范进行。

3 患者注意事项：

3.1 抽血前注意事项

3.1.1 抽血前一天注意休息。不吃过于油腻、高蛋白、高糖份的食物，避免大量饮用咖啡、茶、酒。

3.1.2 采血前禁食8-14小时，可少量饮水。

3.1.3 剧烈运动、精神激动等，都会引起某些指标生理性异常。

3.1.4 抽血当天，不要穿袖口过小过紧的衣服，避免抽血后因衣袖过紧引起手臂血管血肿。

3.1.5 有晕针史或晕血史的患者，抽血前请提前告知。

3.2 抽血后注意事项

3.2.1 抽血后，请按压针眼5-10分钟，勿揉，以免造成皮下血肿。

3.2.2 按压针眼的时间应充分，各人的凝血时间有差异，如有出血倾向，请延长按压时间。

3.2.3 抽血后休息15分钟，若出现晕针现象，如：头晕、眼花、乏力等，应立即平卧，饮少量糖水或温开水，待症状缓解后再进行其他活动。

3.2.4 抽血后24小时内保持抽血手臂的清洁，尽量避免浸浴或桑拿。

3.2.5 若局部出现淤血，24小时候用温热毛巾湿敷，可促进吸收。

 

四、真空采血管的选择及使用

1  目的：

   规范血液样品采集操作过程，提高分析前检验样品采集质量，提高检验结果准确性。

2适用范围：

  适用于检验科所开展项目时所需真空采血的采集防护。

3 物品准备：

  不同用途的一次性真空采血管、一次性垫纸、止血带、脉枕、无菌棉签、复合碘消毒液、口罩、手消液、试管架。

4 操作程序：

4.1 选择采血部位，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉。如肘部静脉不明显时，可改用手背静脉或内踝静脉，必要时也可从股静脉采血。小儿可采用头皮静脉、大隐静脉，选择颈外静脉采血有危险性，以少用为宜。

4.2 消毒：用皮肤消毒剂（如碘酒，棉签）涂擦消毒穿刺部位，以穿刺点为圆心，用蘸有复合碘酒的棉签由内到外螺旋形涂抹，消毒范围为直径大约3厘米，注意消毒过的地方不能重复涂抹，在涂抹的过程中棉签必须也要同时旋转。如果手臂皮肤不足够干净的则需重新擦拭。

4.3 在静脉穿刺部位上方4-7cm处扎止血带，嘱咐受检者握紧拳头，使静脉充分充盈。

4.4 采血：拔除采血穿刺针的护套，以左手固定受检者前臂，右手拇指和食指持穿刺针，沿静脉走向使针头与皮肤成30°角，快速刺入皮肤，然后成5°角向前刺破静脉壁进入静脉腔，，血液自动流入试管内，松开止血带，嘱受检者松拳。如需多管血样，将刺塞端拔除，刺入另一真空采血管即可。达到采血量后，拔下刺塞端的采血试管。用无菌棉签压住穿刺孔，立即拔除刺针，嘱受检者继续按压针孔5-10分钟。

4.5 所有真空抗凝管都需要混匀，重复5-8次，混匀方式为轻柔颠倒混匀，切勿剧烈摇晃，以防止溶血，未加抗凝剂的真空管不需要颠倒混匀。

5  注意事项

5.1 使用真空采血器前应仔细阅读厂家说明书，严格按说明书要求操作。

5.2 尽量选粗大的静脉进行穿刺。

5.3 刺塞针端的乳胶套能防止拔除采血试管后继续流血污染周围，达到封闭采血防止污染环境的作用，因此不可取下乳胶套。

5.4 带乳胶套的刺塞端须从真空采血管的胶塞中心垂直穿刺。

5.5 采血完毕后，先拔下刺塞端的采血试管，后拔穿刺针端。

5.6 使用前勿松动一次性真空采血试管盖塞，以防试管内无负压而造成不出血或采血量不准。

5.7 根据卫生行业标准WS/T225-2002《临床化学检验血液样品的收集与处理》中规定，多管采血时，应推荐以下顺序：

采血顺序	头盖颜色	添加剂	适用范围	抽血量/规格（ml）
1	红□或 黄□	无或 促凝剂	血清铁、风湿全套、免疫全套、降钙素原或输血全套、肿瘤等免疫室项目	3/5（长管）
2	蓝□	枸缘酸钠	凝血四项、七项、VIII、Ⅸ因子、易栓症三项、血栓弹力图普通杯等	2.4/3(短管)
3	黑□	枸缘酸钠	血沉	1.6/3(短管)
4	绿□	肝素钠	肝功能、肾功能、血脂、电解质、心肌酶谱、血栓弹力图AA、ADP、肝素杯	3/5（长管）
5	绿□	肝素钠	血液流变检查	4/4（短管）
6	紫□	EDTA－K2	血常规、糖化血红蛋白、流式细胞等	2/3(短管)

有血培养项目时，优先抽取血培养项目；且需用血培养专用瓶，包括需氧瓶（绿色帽，标本8-10ml）、厌氧瓶（蓝色帽，标本8-10ml），颠倒混匀5-8次。

 

五、样本采集运送过程中的生物安全防护

1 目的

临床检验样品采集过程中为保护患者和采集者安全，要求做必要的生物安全防护。

2 适用范围

适用于检验科所开展项目的所需样品的采集防护。

3 物品准备

口罩、一次性垫纸、手套、帽子、皮肤消毒剂、含氯消毒剂、洗手液及洗手水池等。

4 防护程序

4.1 洗手：与患者和样品接触后，立即洗手。具体洗手方法参照医院感染科下发的《洗手六步法》。如出现以下情况必须洗手；

4.1.1 当沾有肉眼可见的血迹、尿、便、胸腹水等体液以及组织物等时；

4.1.2 工作完成后及离开实验室前；

4.1.3 脱手套后；

4.1.4 在饮食、喝水及上厕所前；

4.1.5 在任何需要手与黏膜、眼睛或破损皮肤接触前。

4.2 戴手套：应戴乳胶、聚乙烯或其他塑料的一次性手套。以下情况时，采血员必须戴手套：

4.2.1 采血人员手部皮肤有破损时；

4.2.2 给不合作的患者抽血时；

4.2.3 皮肤穿刺采血时；

4.2.4 给新采血人员做培训时（既保护学生又可以使学生习惯戴手套采血）

4.3 清除血迹：一旦出现血样污染，使用医用消毒剂，清除血迹。具体操作如下：

4.3.1 清除前应先戴乳胶手套，有条件时可穿防护服。如果血迹中带有碎玻璃或其他锐器物时，先将其清除，切勿直接与手接触；

4.3.2 用手纸、纱布或纸巾等吸干血迹，以增加消毒剂的消毒效果；

4.3.3 清洗污染面，并吸干；

4.3.4 使用中效至高效医用消毒剂消毒表面；

4.3.5 可吸干消毒液或消毒液自行晾干；

4.3.6 用水冲洗表面并擦干防滑；

4.3.7 将所有废弃物置于黄色感染垃圾袋内，根据医院相关规定统一处理。

4.4针头的使用与处理：将用过的针头放入锐器盒内，根据医院相关规定统一处理。

5 血液采集中意外的应急处理：

样本采集过程中出现针头损伤皮肤、黏膜或眼睛，视情节严重程度及时向检验科生物安全员报告，必要时上报医院感染办公室或生物安全管理委员会，同时做必要的处理和记录。

6 原始样本运送过程中的生物安全防护

    常规检验：病房患者的原始样品由检验科卫生员负责每天定时（早6点30分—8点前）收集后送到住院部检验科接诊室，并由接诊室接收人员在电脑中签收。

    门诊检验：门诊患者的原始血液样品由检验科卫生员负责每天定时（早8点30分一次；9点30分一次；10点30分一次）收集后送到检验科接诊室，并由接诊室接收人员在电脑中签收。其它时间的急诊标本由各病区护士、卫生员自行送至检验科接诊室，并由接诊室接收人员在电脑中签收。

    原始样品必须用带盖子及时安全送到检验科。运送过程中严防泄漏或溅出，避免剧烈颠簸晃动和阳光直射。

 

六、原始样本的采集要求

原始样本的采集

--静脉血

1 目的： 

 规范采集全部静脉血样品的操作过程，减少分析前因素对检验结果的影响，确保检验结果的准确性。

2适用范围：

适用于检验科所需静脉血液样品的采集。

3物品准备：

止血带、一次性垫纸、无菌棉签、皮肤消毒剂、一次性采血针、静脉真空采血管、试管架、口罩和手套。

4检验申请单：

4.1住院患者检验申请单由医生在住院医生工作站开具；

4.2门诊患者检验申请单由医生在门诊医生工作站开具；

4.3检验申请单内容应包括：受检者姓名、性别、年龄、住院号/门诊号、开单时间、采血时间、临床诊断、样品属性、检验项目、申请医生等基本信息。

5患者准备：

参见《九、检验项目申请及患者准备的要求》。

6操作步骤：

6.1医生填写检验申请单

6.1.1门诊医生开电子申请单、打印纸质申请单，受检者持门诊医生开具的纸质申请单，缴费后，到门诊检验科采血，采血工作人员将根据检验项目取相应的真空采血管，撕下真空采血管上的小条码贴在纸质申请单上准备采血。

6.1.2病区医生在医生工作站开具检验医嘱，由护士在护士工作站根据检验医嘱绑定试管条码，在已绑定的试管上写上病人信息，待采血时使用。

6.2  门诊受检者一般采用坐位采血，病区受检者采用坐位或卧位均可，特殊患者或有特殊体位要求的检查可采用特殊体位。

6.3  选择血管：常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉，小儿可采用颈外静脉、大隐静脉、头皮静脉等。

6.4  在穿刺部位肢体下放一次性垫纸。

6.5  用皮肤消毒液消毒穿刺部位。

6.6  在静脉穿刺部位上方4-7cm处扎止血带，嘱咐受检者握紧拳头，使静脉充分充盈。

6.7  穿刺：

6.7.1  取静脉穿刺针，摘除静脉穿刺针上的保护套。

6.7.2  进行静脉穿刺，穿刺成功后，松开止血带，受检者松拳，抽血至定量真空采血管规定的毫升量，用消毒棉签压住采血处，拔除针头，嘱咐受检者按压5-10分钟，凝血功能不好者，可延长按压时间。

6.8  将所抽检的样本放于干燥试管架上待送检。

6.9  采血完毕后，将采血器材统一置于指定的地点统一处理。

6.10  特殊项目（含外送项目、高血压全套等）采血要求：咨询检验科相关负责人员进行采血。

7 注意事项：

7.1  采血前应核对受检者姓名、床号及检验项目，明确样品要求。

7.2  真空管多管采血的先后顺序参见《十、真空采血管的选择及使用》。 

7.3  血常规、糖化血红蛋白、流式细胞、血凝、血沉、血流变、血栓弹力图等抗凝用血在采血时最好边采血边摇匀或采血后立即将试管轻轻颠倒180°混匀5-8次，使血液与抗凝剂充分混匀以防止形成微小凝块，影响检测结果。血常规标本除少数取静脉血有困难的患者外，尽可能使用静脉穿刺方式采集标本，取血后要在8h内完成检测。

7.4避免充血和血液浓缩：采血时应快，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时尽量做到不超过2分钟，否则将使局部组织发生缺氧，血管内液与组织液交流引起血液成分的变化，影响检测结果。

7.5  做葡萄糖耐量试验时，应在真空采血管上注明采血时间。

7.6  严格控制采血量与抗凝剂比例（9:1），以免影响检测结果。血凝检验时，如标本的HCT>0.55时，应对血液与抗凝剂的体积比进行调整。

7.7  如遇受检者发生晕针，应立即拔除针头，让其平卧。必要时可联系临床医生采取相应措施。

8 样品运输及试验前存放：

使用全自动血液分析仪时,未能及时检验的抗凝血样品在室温下保存，8小时内检验完毕。一般白细胞、红细胞、血小板可稳定24小时，白细胞分类可稳定6-8小时，血红蛋白可稳定数日，4℃保存可使血小板计数结果偏低。

使用流式细胞仪时,未能及时检验的抗凝血样品在室温下保存不超过24小时。

血凝采血后应在实验室规定的时间内离心并分离出血浆，若标本不能在4h内检测，应分离出血浆并转移至洁净干燥的合乎要求的试管中加盖保存于2-8℃。当天不能检测的样本应在-20℃条件下保存、两周内完成检测。-70℃条件下标本的保存期限可达6个月。

生化、免疫等血清学检查在收到标本后应立即离心分离出血清，若使用带分离带分离胶的采血管，离心即可。室温放置不超过4小时，4℃保存不超过8小时，长时间保存需在冰冻条件下，且只能复融1次。

9 样品拒收：

9.1  检验申请单填写内容与血样品容器标识填写内容不一致或容器标识脱落、不全时可拒收。

9.2  样品量不足可拒收（如婴幼儿、严重烧伤等特殊情况除外）。

9.3  抗凝血中有凝块、严重溶血、脂血、黄疸者可拒收。

9.4  样品标识不清或不能正确识别可拒收。

10 附加检验项目申请：

  样品采集送出后需附加检验项目的，由临床医生根据需要口头向相关专业组提出申请，并尽快补上申请单。

11 其它：

  如分析失败，将对同一原始样品进行检测。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样复检。  

                            

                                  --尿液

1 目的：

收集尿液样品以做相关检测项目。减少分析前因素对检验结果的影响，确保检验结果的准确性。

2 适用范围：

  适用于检验科尿常规、尿沉渣分析、尿生化、尿液细菌学检查以及其他尿液项目的检查。

3 物品准备：

  一次性清洁干燥尿杯、尿管、无菌杯（微生物培养使用）。

4 检验申请单：

4.1  住院患者检验申请单由医生在住院医生工作站开具；

4.2门诊患者检验申请单由医生在门诊医生工作站开具；

4.3  检验申请单内容应包括：受检者姓名、性别、年龄、住院号/门诊号、日期、临床诊断、样品类型、检验项目、申请医生等基本信息。

5 患者准备：

5.1  男性病人的准备：

5.1.1  采尿前病人应先洗手。

5.1.2  指导未行包皮切除的患者应推上包皮露出尿道口。

5.1.3  用消毒清洁的小布巾或类似物清洁头，从尿道口开始向上清洁。

5.1.4  病人开始排尿时将前段尿排入便盆或厕所，收集中段尿到适当未污染的容器中，多余的尿排入便盆或厕所。

5.1.5  如病人不能执行所推荐方法，需要提供帮助时，应戴手套。

5.1.6  避免污染：应该避开包皮垢、粪便、清洁剂等各种物质的污染，不能从尿布或便池内采集样本。

5.2  女性病人的准备：

5.2.1  采尿前病人应先洗手；

5.2.2  病人蹲于便盆或马桶之上；

5.2.3  用消毒小布巾或清水清洁尿道口和周围处；

5.2.4  病人开始排尿时将前段尿排入便盆或厕所，收集中段尿到清洁干燥的容器中，多余的尿排入便盆或厕所；

5.2.5  如病人不能执行所推荐方法，需要提供帮助时，应戴手套。

5.2.6  避免污染：应该避开月经、阴道分泌物、粪便、清洁剂等各种物质的污染，不能从尿布或便池内采集样本。

5.3  使用合格的容器：应用透明、不与尿液发生反应的惰性环保材料制成的一次性容器，容器必须干燥、清洁、防渗防漏，可密封运送，而且具有患者的唯一标识。

5.4  特殊要求：若需采集清洁尿，如中段尿做细菌培养，应该使用一次性灭菌容器。

6 操作步骤：

6.1  医生工作站开具申请单

6.1.1  门诊患者持医生开具的检验申请号缴费后，到检验科领取一次性尿杯，做微生物培养应该使用一次性灭菌容器，到卫生间收集样本后送检并等待检查。

6.1.2  病区医生在医生工作站开具检验医嘱，由护士在护士工作站根据检验医嘱绑定尿试管条码，在已绑定的尿试管上写上病人信息，发放给患者并告知患者留尿方法和留尿时间及注意事项，在规定的时间内、用规定的方法留取尿液样品。收集时段尿液标本时应告知病人时间段的起点和终点。时间段尿液标本应包括该时间段病人排出的所有尿液。必要时，应告知病人标本保存的注意事项。要进行多项分析时，尿液应分装，应根据不同的分析目的，选择不同的运送和保存方法。

7 尿液样品的种类及留取方法：

7.1  晨尿：清晨起床后，在未进早餐和做其他运动之前排泄的尿液，又称为首次晨尿。但在采集前一天应提供留取注意事项，如外阴、生殖器清洗方法，留取中段清洁尿等。晨尿采集后在2小时内送检，否则应采取适当防腐措施。

7.2   随即尿：随时排泄，无需患者做任何准备的尿液，称为随机尿。此类样品容易获得，是尿常规检查最常用的方法，但受饮食、饮水、输液、剧烈运动等多种因素影响，病例成分容易漏诊。仅适用于门诊、急诊病人的常规过筛检验。可由患者自己留取。

7.3 空腹尿：即进餐前的尿液样品。此样品对于糖尿病患者的尿液测定更为敏感。

7.4   餐后尿：即通常在餐后2-4h收集的尿液，对于病理性蛋白尿、尿糖测定更为敏感。午餐后尿对尿胆原检查特别有益。

7.5  24小时尿：病人于早晨8:00排空膀胱的尿液，再收集以后24h内所有尿液样品。要规范采集此类尿样品较为困难，最常见的问题是未能采集到全部24h内的尿，因此，要求患者密切配合。可由患者自己留取。

7.5.1  收集方法：必须明确告知患者尿样品采集具体步骤：①容器:容量最好大于4L,清洁,无化学污染,②方法:在开始样品采集的当天(如早晨7点),患者排尿并弃去尿液,从此时间开始计时并留取尿液,将24h的尿液全部收集于尿容器内。③在结束留取尿液样品的次日（如早晨7点），患者排尿且留尿于同一容器内。④测定尿量：准确测量并记录总量。⑤混匀样品：全部尿液必须充分混匀，再从中取出适量（一般约40ml）用于检验，余尿则弃去。⑥避免污染：儿童24h尿样品采集过程中，应特别注意避免粪便污染。

7.5.2  主要用途：24h尿样品主要用于24小时的尿总蛋白、尿白蛋白、尿肌酐等物质的定量。

7.6  中段尿（midstreamurine)留尿前先清洗外阴，女性应清洗尿道旁的阴道口，男性应清洗；再用0.1%清洁液（如新洁尔灭等）消毒尿道口，但不可用抗生素和肥皂等清洗尿道口，以免影响细菌生存力。在排尿过程中，弃去前、后时段排出的尿液，以无菌容器收集中间时段的尿液。主要可避免生殖道和尿道远端细菌的污染，一般用于细菌培养。

8 注意事项：

8.1 尿液分析应在收集样品2小时内作分析。收集24小时尿液样品，应添加相关检测项目使用要求的防腐剂，如不能立即送检，应在0-4℃冰箱中冷藏。微生物检验的样品应取尿道排出的中段尿并立即送检。

8.2  口服药物可影响检测结果，如静脉滴注大剂量青霉素、维生素C等可影响尿蛋白、尿糖及尿潜血试验结果。

8.3  样品应避免污染。

9 样品运输及试验前存放：

9.1  样品运输

9.1.1  尿液样本采集后，应在2小时内送检并且立即检测。

9.1.2  样本应由专人输送，并保证输送途中样本的安全性。所有尿液标本应加盖运送。

9.1.3  为避免尿胆红素和尿胆原等化学物质因光分解或氧化而减弱，样本送检时应注意避光。

9.2  样品保存  样品采集后应尽快送检。最好在2小时内分析，如不能及时检测或需要另存时，应存放在2-8℃未检测样品存储冰箱（仅限于实验室仪器故障及样品量大时使用）或加防腐剂，最多可保持4小时。如超出时限，应拒收标本，指导患者重新留取。24小时尿液样品原则上应首选2-8℃冰箱冷藏，在收集全部尿液样品后混匀并测量尿液总量，取不少于10ml后送检。（申请单需注明受检者身高、体重及尿量）。尽量不要使用防腐剂，除非在标本收集后2小时之内无法进行尿液分析。如果尿液中需分析的成分不稳定或要进行细菌培养，标本中可加入特定的化学防腐剂。24小时尿液标本收集过程中，收集到的尿液应放在2-8℃中。

9.2.1  冷藏：应封口后冰箱冷藏（2-8℃）储存。2-8℃冷藏保存仅适合部分项目，不适合胆红素和尿胆原，而且冷藏保存可令无定型尿酸盐和磷酸盐沉淀，影响显微镜检查。

9.2.2 防腐：常用的化学防腐剂有：浓盐酸和甲苯，由于甲苯有致癌作用，现在已经使用很少。常用于尿糖、尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，一般每升尿液中加浓盐酸10ml左右，防腐剂在第一次排尿后加入即可，它在尿液表面形成薄膜，防止细菌繁殖。

10 其他：

  如分析失败，将对同一原始样本进行检测。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新按照要求采集检验。

11 样品拒收：

11.1  样品放置时间过长，细菌繁殖，影响检验结果。

11.2  混有前列腺液、、阴道分泌物、月经已经粪便等的样品。

11.3  未准确计时留取的尿液样品，计时尿无尿量的尿液样品。

 --粪便

1 目的：

  收集粪便样本以做实验室开展的各项检验，减少分析前因素对检验结果的影响，确保检验结果的准确性。

2 适用范围：

  做粪便常规、粪便微生物细菌学检测及实验室开展的其他检验项目所需粪便样品的采集。

3 物品准备：

  一次性清洁防水便盒、无菌便盒。

4 检验申请单：

4.1住院患者检验申请由医生在医生工作站开具；

4.2门诊患者由医生在门诊工作站开具检验单；

4.3检验申请单内容应包括：受检者姓名、性别、年龄、住院号/门诊号、开单时间、临床诊断、样品属性、检验项目、申请医生等基本信息。

5 患者准备：

应熟知粪便样品采集方法及注意事项。

6 操作步骤：

6.1医生工作站开具检验申请单

6.1.1门诊患者持医生开具的检验申请号缴费后，到检验科领取一次性便盒或无菌便盒（细菌培养时使用）。到卫生间收集样品后送检并等待检查。注意：应取指头大小粪便或稀便2ml放入粪便盒内并进行封闭（盖紧盒盖）。

6.1.2病区医生在医生工作站开具检验医嘱，由护士在护士工作站根据检验医嘱绑定一次性专用粪便盒或无菌便盒条码，在已绑定的一次性专用粪便盒或无菌便盒上写上病人信息，发放给患者并告知患者留取粪便方法和留便时间及注意事项，在规定的时间内取指头大小粪便或稀便2ml放入粪便盒内并进行封闭（盖紧盒盖）。

6.2通常采用自然排出的粪便，无粪便排出而又必须检查时，可经肛门指诊或采便管拭取样品。

6.3要求采集足量的样品，至少应采集指头大小的粪便或稀便2ml，以供复查用或防止粪便干燥。

7 注意事项：

7.1粪便常规检验留取5g左右（指头大小）或稀便2ml左右，粪便样品应留取新鲜粪便的病理成分，如粘液、血液（红色或黑色部分）；若无病理成分，可各部位取材。不得被其它异物污染，不能从尿布、、卫生纸、尿壶或便盆中上取粪便样品。

7.2样品采集后一般情况应于1h内检查完毕，否则可因PH及消化酶等影响导致有型成分破坏分解。

7.3隐血试验，应嘱患者收集样品前3天禁食动物性食物。应注意避免服用维生素C、铁剂、铋剂等药物及动物血液、绿叶蔬菜等食物。

7.4细菌检查的粪便样品应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其他化学药品。

7.5阿米巴滋养体检测应挑取粪便的脓血部分或稀软部分，注意样品保温并立即送检，立即检测。

7.6检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚12时或清晨排便前自肛门周围皱襞处拭取并立即镜检。

7.7血吸虫孵化毛蚴应留取不少于30g的新鲜粪便。

7.8许多肠道原虫和某些蠕虫有周期性排卵现象，所以应连续送检3天，以免漏检。

7.9灌肠或服油类泻剂的粪便不适于做检查样本。

8 样品运输及试验前存放：

8.1样品采集后最好用有盖容器立即送检，应由专人运送，并保证输送途中样品的安全性。

8.2送检过程中防止出现样品溢漏情况，不得污染手、容器外壁和周围其他物品。

8.3寄生虫虫体收集24小时粪便送检。若粪便在短时间内不能检查，可加入10%福尔马林保存样品。用此法保存的粪便样品，虽然放置1个月后，所含虫卵的形态仍可识别，但虫卵的比重增加，不适用于浮集法检查。

8.4细菌学检查的粪便样品，为了转运样品，检查霍乱弧菌、沙门氏菌及志贺氏菌等，应将样品置于洁净干燥无菌带盖容器内，在室温下保存或转运。

8.5检查痢疾阿米巴滋养体，应于排便后立即送检。在寒冷季节须特别注意送检过程和检查时的保温。粪便容器不可混油消毒药品，否则会影响滋养体的活动，以致死亡。若在室温下，粪便放置超过30分钟，滋养体液可失去活动力。

9 其他：

  如分析失败，将对同一原是样品进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。

10样品拒收：

10.1混入尿液、水或其他成分的粪便样品或已经干燥的样品应拒收。

10.2使用容器不当的样品应拒收。

  

--

1 目的：

留取样本以做各项检验，减少分析前因素对检验结果的影响，确保检验结果的准确性。

2 适用范围：

  适用于检验科做常规分析各项目所需样品的采集。

3 物品准备：

  专用洁净干燥有盖塑料盒。

4 检验申请单：

4.1门诊患者由医生在门诊工作站开具检验单；

4.2检验申请单内容应包括：受检者姓名、性别、年龄、门诊号、临床诊断、样品属性、检验项目、申请医生等基本信息。

5 患者准备：

5.1先到检验科领取一次性无菌专用容器，并由医生告知标本留取注意事项。

5.2采集前必须禁欲，包括无遗精或。一般情况下，25岁以下禁欲3天，25-35岁以下禁欲5天，35-45岁以下禁欲7天。

5.3采集前应排净尿液。

6 操作步骤：

6.1门诊患者持医生开具的检验申请号缴费后，到检验科领取一次性无菌专用容器，并由医生告知标本留取注意事项，到指定地点留取样品。

6.2采集方法主要有法和体外排精法。

6.2.1法最为理想。采集者可直接在卫生间内进行，也可以让采集者在一个安静的房间由本人法将射入专用洁净干燥小盒内。

6.2.2体外排精法由于易漏掉精子密度最高的前段，故不主张采用此方法留取。但该方法适用于法或电按摩采集法不能采精的患者。

6.2.3不能用乳胶或塑料制品的避孕套采集。因为避孕套内含有的滑石粉可影响精子活力甚至杀死精子。

7 注意事项：

7.1检验者1周内禁欲同时在身体状态良好情况下采集。

7.2采精前将手和生殖器，特别是用温水洗净，环境应安静无干扰。晨起采精最佳。

7.3运送时间不应超过2小时，最好在1小时内送检，并注意保温。

7.4因精子生成日间变动较大，对于少精患者，不能仅凭一次检查结果做确诊。一般应间隔1-2周检查一次，连续检查2-3次。

8 样品运输及试验前存放：

8.1采集后应立即送检。

8.2在运送过程中，应保持温度在25-35℃，不能将暴露于过冷或过热的环境中，因若低于25℃或高于40，将影响精子活力。在冬天则应将样品放在内衣口袋内贴身运送。

8.3运送时间不应超过2小时，最好在1小时内送检。

9 其他：

  如分析失败，将对同一原是样品进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。

10样品拒收：

10.1样品采集过程中遗漏的或运送过程中洒漏的样品应拒收。

10.2用避孕套采集的样品精子活动率和活动力受影响，此类样品应拒收。

10.3送检时间过长或超过2小时的样品应拒收。

 

--阴道分泌物

1 目的：

采集阴道分泌物样品样本以做各项检验，减少分析前因素对检验结果的影响，保证检验质量。

2 适用范围：

适用于临检室做阴道分泌物常规所需样品的采集。

3 物品准备：

  洁净密闭的塑料专用管（内含无菌棉签、生理盐水）。

4 检验申请单：

4.1住院患者检验申请由医生在医生工作站开具；

4.2门诊患者由医生在门诊工作站开具检验单；

4.3检验申请单内容应包括：受检者姓名、性别、年龄、住院号/门诊号、临床诊断、样品属性、检验项目、申请医生等基本信息。

5 患者准备：

阴道样品采集前24应禁止房事、盆浴、阴道检查、阴道灌洗及局部用药等。

6 操作步骤：

6.1医生工作站开具检验申请单

6.1.1门诊患者在门诊医生工作站开具申请单，缴费后，凭就诊单到妇产科采集样本。

6.1.2住院患者在医生工作站开具检验申请单后，由护士告知样品收集的注意事项，到医生处采集样本。

6.2取材所用器械需要清洁，不粘有任何化学药品或润滑剂。

6.3一般用无菌棉拭子自阴道后穹窿、子宫颈或阴道壁上多部位取材。

6.4阴道清洁度检查，样品采集时必须防止污染，应用新鲜样品涂片，如果怀疑有滴虫感染时要特别注意保温。

7 注意事项：

7.1正常阴道分泌物的量和性状，随着月经周期中雌激素水平的多少而改变，在排卵期较多，月经开始之前与月经终止2-3天，分泌物可能有些颜色，这是普遍现象。

7.2阴道分泌物的量随个人体质以及年龄的不同而不同，更年期以后阴道分泌物会减少甚至趋向干燥。

7.3妊娠期、服用避孕药或体质虚弱时，阴道分泌物常增多，但性状近似正常。

7.4服用一些影响体内激素变化的药物时，可能会引起阴道分泌物的改变。

7.5经期的女性患者不宜进行阴道分泌物检查。

8 样品运输及试验前存放：

8.1样品采集后应立即送检。

8.2送检过程中应防止污染，怀疑有滴虫感染时应保温运送。

9 其他：

如分析失败，将对同一原是样品进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。

10样品拒收：

10.1样品采集后未能及时送检的，放置时间过长，细胞会溶解破坏，影响检验结果。

10.2要求查找滴虫的样品在送检过程中未采取保温措施可拒收。

 

--脑脊液

1 目的：

 抽取脑脊液样品以做常规，生化，免疫和细菌学检验，减少分析前因素对检验结果的影响，确保检验结果的准确性。

2 适用范围：

 适用于检验科做常规，生化，免疫学检验的脑脊液样品采集。

3 物品准备：

 一次性垫巾，复合碘消毒液，2%利多卡因，血管钳，无菌洞巾，无菌纱布，无菌棉签，骨髓穿刺针，口罩，载玻片，试管及无菌管等。

4 检验申请单：

4.1 住院病人由医生在医生工作站开具检验申请单。

4.2 检验申请单内容应包括：受检者姓名，性别，年龄，住院号，采集时间，临床诊断，样品属性，检验项目，检验金额，申请医生等基本信息。

5 患者准备：

 病人应了解腰椎穿刺术到注意事项。放松心情，积极配合医生工作。

6 操作步骤：

6.1 在病区医生工作站开具申请单，由护士在护士工作站将根据检验单打印到条码（含唯一编号）贴在专用容器上，由临床医护人员准备采集器材并通知患者做好采集前准备。采集地点和采集时间。

6.2 部位：以骼后上棘连线与后正中线到交点为穿刺点，相当于第3～4腰椎棘突间隙。有时也可在上一或下一腰椎间隙进行：小儿则于第4和第5腰椎间隙穿刺。

6.3 方法：

6.3.1 患者侧卧于硬板床。背部与床面垂直，两手抱膝紧贴腹部，头向前胸屈曲。使躯干呈弓形，脊柱尽量后凸以增宽脊椎间隙。

6.3.2 术者用左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针以垂直背部方向缓缓刺入。针尖稍斜向头部，成人进针深度约4-6cm，儿童约2-4cm。当针头穿过韧带与硬脑膜时，有阻力突然消失落空感，此时可将针芯慢慢抽出，即可见脑脊液流出。

6.3.4 将脑脊液2～5ml分别收集于3个无菌试管中，每管1～2ml即可，第一管用于细菌培养检查（无菌操作），第二管做化学和免疫检查，第三管用于脑脊液常规，细胞学检查。

6.3.5 术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，胶布固定。

6.3.6 去枕平稳4-6h，以免引起术后低颅压头痛。

6.3.7 采集的脑脊液应尽量避免凝固和混入血液。

7 注意事项：

7.1 严格掌握禁忌症，凡疑有颅内压升高者必须先做眼底检查，如有明显神经水肿或有脑疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症、颅后窝有占位性病变者均列为禁忌。

7.2 穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常时，应立即停止操作，并做出相应的处理。

7.3 鞘内给药时，应先放出等量脑脊液，然后再将等量置换性药液注入。

7.4 样品采集前应核对好姓名和检验项目，明确样品要求。

7.5 收集样品后，必须立即送检。久置可致细胞破坏，葡萄糖分解，病原菌破坏或溶解。细胞计数样品应注意防止凝集，如遇高蛋白标本时，可用EDTA盐抗凝。

8 样品运输及试验前存放：

8.1 收集样品后要立即送检，不能超过1小时送到实验室，常规检测操作完成不能超过2小时。

8.2 因样品采集较难，全部送检过程中应注意安全。

9 其他：

 如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。

10 样品拒收及处理：

10.1 样品采集后未能及时送检并超过1小时的样品应拒收。

10.2 已经凝固的样品应拒收。

10.3 常规脑脊液检查的样品量最少量为0.5ml；其他脑脊液检查的样品应为1ml，否则拒收。

11 附加检验项目申请：

 样品采集送出后需附加检验项目的，由临床医生根据需要口头向相关专业组提出申请，并尽快补上申请单。

 

--胸腹水

1 目的：

抽取胸腹水样品以做各项检验。

2 适用范围：

适用于检验科做常规，生化、免疫学检验的浆膜腔积液采集。

3 物品准备：

一次性垫巾，复合碘消毒液、2%利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、试管及容器（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期等）、试管架、编号笔，口罩。

4 检验申请单：

4.1 住院病人由医生在医生工作站开具检验申请单。

4.2 检验申请单内容应包括：受检者姓名，性别，年龄，住院号，采集时间，临床诊断，样品属性，检验项目，检验金额，申请医生等基本信息。

5 患者准备：

放松心情，积极配合医生工作。

6 操作步骤：

6.1 病区医生工作站开具检验申请单：在病区医生工作站开具申请单，由护士在护士工作站将根据检验单打印到条码（含唯一编号）贴在专用容器上，由临床医、护人员准备采集器材并通知患者做好采集前准备。采集地点和采集时间。

6.2 部位：

6.2.1 胸水：在胸部叩诊实音最明显等部位，一般取肩胛线或腋后线第7-8肋间，有时也可取腋中线第6-7肋间或腋前线第5肋间。

6.2.2 腹水：左下腹脐与骼前上棘连线第中、外1/3交点；脐与耻骨联合连线中点上方1.0cm，偏左或偏右1.5cm处；侧卧位，在脐水平与腋中线之延长线相交处。此处常用于诊断性穿刺；少量积液，尤其有包囊性分割时，须在B超指导下定位穿刺。

6.3 方法：

6.3.1 胸水：取坐位，两前臂置于椅背上，前额付于前臂上；不能起床者取半卧位，前臂上举抱于枕部。

腹水：术前应排尿以防穿刺损伤膀胱。取坐位靠背椅上，衰弱者可取半卧位、平卧或侧卧位。

6.3.2 常规消毒，拿无菌手套，覆盖无菌洞巾。

6.3.3用2%利多卡因在下一肋骨上缘的穿刺点自皮肤至胸膜壁层进行局部浸润麻醉。

6.3.4 术者以左手食指和中指固定穿刺部位皮肤，右手将穿刺针在麻醉处缓缓刺入，当针锋抵挡感突然消失时，进行抽液。如用较粗的长穿刺针代替胸腔穿刺针时，先将针座后连续的橡皮管用血管钳夹住，然后进行穿刺，进入胸腔后再接上注射器，松开止血钳，抽吸液体，抽满后再次夹住橡皮管，取下注射器，将液体注入弯盘，计量及送检。诊断性穿刺，可直接用20ml或50ml注射器及适当针头进行；大量放液时，可用针座接一橡皮管容器。留取样品送检。

6.3.5 抽液结束后拔出穿刺针，覆盖无菌纱布，稍用力压迫片刻，用胶布固定后嘱咐患者静卧。大量放液后，需束以多头腹带，以防腹压骤降，内脏血管扩张引起血压下降或休克。

6.3.6 样品最好留取中段积液分别收集于3个无菌消毒杯（红盖、一杯做微生物（包括结核杆菌）检查，留取10ml，另两杯做常规检测及细胞学检查，各留取50ml，共计100ml）。如果需要检查胸腹水生化和免疫学项目，还需一个肝素管（绿盖、生化检查），一个促凝管（黄盖、免疫学检查），立即送检；为防止出现凝块、细胞变性、细菌破坏自溶等，标本中应加入抗凝剂。常规及细胞学检查宜用EDTA-2K抗凝，生化检查标本宜用肝素抗凝。三瓶的顺序不能颠倒。

6.3.7 采集的积液应尽量避免凝固和混入血液，必要时可用EDTA钾盐抗凝。

7 注意事项：

7.1 手术前向患者说明穿刺目的，消除顾虑。

7.2样品采集前应核对好姓名和检验项目，明确样品要求。

7.3 放液前、后均应测量腹围、脉搏、血压，检查腹部体征，以观病情变化。术中密切观察患者反应，如有头晕、面色苍白、出汗、心悸、胸部压迫感等反应，或出现连续性咳嗽、气促等现象，应立即停止抽液，并进行其他对症处理。

7.4 一次抽液不应过多，胸水：诊断抽液50-100ml即可；减压抽液，首次不超过600ml，以后每次不超过1000ml；如为脓胸，每次尽量抽尽。

腹水：放液不宜过快、过多。如肝硬化患者一次放液一般不超过3000ml，过多放液可诱发肝性脑病和电解质紊乱。放腹水时若流出不畅，可将穿刺针稍作移动或稍变换体位。

7.5 严格无菌操作，操作中防止空气进入胸腔，始终保持胸腔血压。

7.6 收集样品后，为防止细胞变性出现凝固或细胞破坏溶解等，必须立即送检。必要时可用EDTA钾盐抗凝。

7.7 腹水穿刺术后嘱咐患者平卧，并使穿刺针孔位于上方以免腹水漏出。

7.8 有肝性脑病先兆、结核性腹膜炎粘连包块、包虫病及卵巢囊肿者禁忌穿刺腹水。

8 样品运输及试验前存放：

8.1 样品采集后应立即送检。

8.2 因样品采集较难，全部送检过程中应注意安全。

9 其他：

如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。

10 样品拒收及处理：

10.1 样品采集后未能及时送检并超过2小时的样品应拒收。

10.2 已经凝固的样品应拒收。

 

七、原始样本的运送与接收

1  原始样本的识别

   要包括样本的唯一标识和患者信息。

   样本容器的标签上统一张贴条形码，至少应注明下列内容：患者姓名、年龄、性别、送检科室、样本类型、采集样本的时间等信息。

2  运送流程

样本的运送，应保证样本在不影响检验结果质量的时间和环境条件下送至检验科接诊室。运送的过程包括采集登记、送检签收、运送和实验室接收4个部分。

2.1  采集登记

     所有样本在采集后由采集人员在信息系统中扫条码确认采样时间和采样人信息，然后放在指定的存放位置，等待检验科卫生员前来收取。对于急诊或节假日样本应由各病区自行送至检验科接诊室。

2.2  送检签收

2.2.1  对于一般样本，检验科卫生员定时到临床科室收取，并确认交接后送至检验科接诊室。

3  样本采集运送中的生物安全要求。

3.1  所有采集的容器，均需要密闭。

3.2  采集所用的针头、注射器等耗材，在使用后需毁型，所用材料统一收集，进行无害化处理。

3.3  采集微生物样本所用的耗材，经高压蒸汽灭菌后，由医院统一收集进行无害化处理。

3.4  所有样本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。

3.5  样本在机构所属建筑物内运送应遵守该机构的安全运输规定。样本运送到机构外部应遵守现行的有关运输可传染性和其他生物源性材料的法规。

3.6  样本、培养物和其他生物材料在实验室间或其他机构的运送方式应符合相应的安全规定。

4  样本的接收

   样本到达实验室后，运送人员应和检验科接诊人员当面核对样本的数量、患者姓名、样本类型、检测项目、来源科室、到达时间等，并在LIS中签收。实验室还应制定样本接收与拒收标准，并按照标准对样本进行验收。

4.1  检验科接诊人员至少应按一下程序和内容进行验收

4.1.1  唯一性标识是否正确无误。

4.1.2  如果是手写方，申请单与容器标签上的信息是否一致。

4.1.3  样本采集时间与实验室接收时间之间的间隔是否在接受范围。

4.1.4  检查容器是否合适、有无破损，盖子或塞子是否脱落。

4.1.5  检查样本是否足够，并对外观进行检查，包括有无溶血、血清中有无乳糜状、抗凝血中有无凝块等，微生物培养样本是否有被污染的可能。

4.2  检验科拒收样本的规定：出现一下情况应拒收样本

4.2.1  样本标签信息不全或医嘱停止的样本。

4.2.2  位置标识错误或不清楚的，如标签脱落或字迹不清。

4.2.3  样本量太少，不足以完成检验目的所要求的检测。

4.2.4  溶血、乳糜或黄疸的样本，如有长期乳糜血患者（短期内控制饮食不能避免乳糜者），与临床医生及患者沟通，并标注“乳糜血，结果供参考”字样。

4.2.5  用错样本容器或容器破损的样本。

4.2.6  在输血输液侧采集的样本；样本来自输液管或明显受污染。

4.2.7  抗凝血，量过少或过多，导致抗凝不当、样本凝固等。

4.2.8  样本采集后，储存、运输不当或送检时间延误。

4.2.9  使用已有检验结果的同一条码采集的样本。

4.2.10  微生物样本无菌容器破裂、有明显污染或非无菌容器盛装样本。

4.2.11  微生物样本无菌容器标识与化验申请单不符。

4.2.12  微生物样本采集时间过长已经干燥等。

4.2.13  微生物样本用过期的无菌容器采集样本、采集样本量不足等。

4.2.14  微生物室对于不合格样本，应及时通知采集人员重新留取样本。

4.2.15  对样本采集有特殊要求的项目，所送检的样本不完整。  

4.2.16  需加防腐剂而未加防腐剂导致样本腐败者

      以上是样本拒收的常用标准，对特殊情况或具体样本各实验室还可自行规定。样本验收情况应有记录，样本不合格的情况应及时反馈给申请科室或临床医生。对某些特殊情况，拒收或退回样本可能有困难，应于申请医生直接联系，提出处理意见，如申请医生仍要求检验，实验室应在检验报告单上对检验不合格的样本进行描述，说明对检验结果可能产生的影响。

5  因分析失败而需再检验或对同一原始样本做进一步检验 

5.1  因检测样本以外的因素导致分析失败，则需去除影响因素，在有效时间内重新检测。

5.2  若分析失败为检测样本所致，需与临床沟通，重新采集样本进行检测。